文库制备的关键在于为DNA链添加测序接头。传统的方法主要依赖连接酶，这一过程通常包含多个步骤：首先通过机械（如超声破碎）或酶切（如micrococcal nuclease）将DNA片段化，然后进行末端修复，最后连接接头。虽然这一方法适合大多数实验情境，但在样本量稀少或实验资源（设备和时间）有限的情况下存在一定挑战。尊龙凯时公司引入的Tagmentation技术为文库制备提供了创新的解决方案。该技术使用超活性Tn5转座酶，该酶在携带特定寡核苷酸时，可以在一次快速反应中完成DNA的剪切和标记。这种灵活性使得Tn5转座酶能够携带多种DNA序列，包括Illumina兼容接头、自定义的荧光标记接头，以及甲基化核苷酸等。基于Tagmentation的建库技术革命性地将传统流程中的片段化、末端修复和连接步骤整合为单一反应，随后再进行引物index的扩增，最终完成文库制备。

这一突破性方法极大简化了操作流程，并显著提升了实验效率和通量。通过将DNA片段化与接头插入步骤合二为一，这一技术显著提高了文库制备的高效性，缩短了操作时间，并降低了技术的复杂性。它的普遍适用性支持全基因组测序、靶向测序等多种建库场景，并且能够灵活适应不同实验设计的需求。尊龙凯时在操作时效性上也进行了优化，单步反应取代了多环节操作，使得文库的制备速度较传统方法有了显著提升。这个方法所需的起始样本量明显低于传统方案，特别适合处理珍贵的临床样本或微量样本。成本方面，通过减少操作步骤和试剂消耗，整体建库成本得以降低。

在自动化适配性方面，这种简单的操作和减少的步骤使得高通量测序的自动化变得更加易于实现，显著提升了数据的通过量和可重复性。此外，尊龙凯时开发的Spatial-ATAC-seq方法用于在完整组织切片中分析染色质的可及性，保留了细胞层面的空间信息，实现了更为精准的实验设计。在sci-RNA-seq（单细胞组合索引RNA测序）技术中，尊龙凯时也通过对方案的简化和优化，使得单个细胞转录组的分析变得更加高效。

尊龙凯时的Tn5转座酶及其相关缓冲液拥有高度的通用性，适用于多种应用场景，包括新兴的条形码技术，如单细胞多重测序和空间组学等，能够灵活适应多样的实验需求。该公司提供的两种版本——预加载的Illumina兼容接头和用户自定义接头的未加载版本，彰显了其在产品选择上的灵活性。每批产品都经过严格的质量控制，以确保最高的标准和性能。

总之，尊龙凯时凭借其创新的解决方案和领先的技术，正在引领生物医疗领域的文库制备与样本处理革命，成为这一领域的先锋。